9月15日，同济大学高绍荣实验室在国际顶级期刊《Nature》杂志在线发表最新研究成果。首次从全基因组水平上揭示了小鼠植入前胚胎发育过程中的组蛋白H3K4me3和HK27me3修饰建立过程，并发现宽的（broad）H3K4me3修饰在植入前胚胎发育过程中对基因表达调控发挥重要作用，为进一步研究植入前胚胎发育以及早期细胞分化的表观遗传调控机制打开了一扇大门。

随着精卵结合的发生，两种终末分化的生殖细胞的结合形成具有全能性的受精卵。随后，父源和母源的基因组要进行广泛的表观遗传重塑以适应胚胎发育的需要。这些表观修饰的变化是胚胎基因组激活及第一次细胞谱系分化的关键。组蛋白的转录后修饰直接调控了基因表达的激活和沉默。早期的研究中，利用抗体免疫荧光染色的方法发现，大部分的组蛋白修饰在植入前胚胎的发育过程中都发生了明显的变化。而一些调节组蛋白修饰的酶的异常表达或缺失会导致胚胎发育异常甚至植入前胚胎的死亡。这些研究证明组蛋白修饰的变化在早期胚胎发育的过程中起了很重要的作用。但是在植入前胚胎中这些组蛋白修饰在基因组上是如何分布及变化的，这些变化如何调控胚胎基因的表达以及第一次细胞命运的分化还是未知。 

全面了解组蛋白修饰变化最好的方法是利用特定组蛋白修饰的抗体进行染色体免疫共沉淀并结合二代测序的ChIP-seq技术。但是由于植入前胚胎的细胞量很少，并且很难获得及培养，因此要得到传统的ChIP-seq技术需要的百万级的细胞数量是不可能的。在本研究中，高绍荣教授研究组利用并改进了最新发表的适用于低起始量细胞的ULI-NchIP （ultra-low-input micrococcal nuclease-based native ChIP）技术。利用极少量的细胞检测了小鼠植入前胚胎发育各个时期的组蛋白H3K4me3和H3K27me3修饰变化情况，这两个修饰分别对应基因的激活和沉默，这是目前已知的第一次系统地对小鼠植入前胚胎的组蛋白修饰进行全基因组水平上的检测。 

通过分析检测到的数据，他们发现组蛋白H3K4me3和H3K27me3修饰的建立规律明显不同，H3K4me3修饰的建立更迅速，并且倾向于建立在CpG含量较高且DNA甲基化水平较低的启动子区域，而H3K27me3修饰的建立比较缓慢，并且倾向于建立在CpG含量较低的启动子区域。 

研究中最重要的发现是，通过数据的分析，看到虽然H3K4me3修饰在2-细胞时期之后很少出现完全的建立和去除，但是H3K4me3信号的宽度却是在不断变化的，并且在早期胚胎的基因组中存在大量宽的（>5kb）H3K4me3信号。而这种宽的H3K4me3信号在细胞系以及普通的体细胞中含量都很低。重要的是，这些宽的H3K4me3信号跟基因的高表达以及细胞的发育命运都有很密切的关系，这预示着在早期胚胎中，H3K27me3等修饰还没有完全建立起来，细胞对基因表达的调控可能有着完全不同的表观遗传调控机制，这其中就包括依靠H3K4me3修饰的宽度的变化来调节基因表达。 

该项研究还发现，在胚胎发育过程中，H3K4me3修饰的宽度是逐步变化的，很少出现宽的H3K4me3修饰直接的建立和去除，这使宽的H3K4me3修饰可以维持相对稳定，而在本研究中以及以前的研究结果中都发现宽的H3K4me3修饰更容易出现在特定细胞类型的重要调节因子上，这说明宽的H3K4me3修饰的存在使得即使有外界环境的干扰，胚胎中这些重要调节因子可以维持基因表达水平的稳定。而一项最近的研究成果也证明，强的组蛋白修饰信号的存在与稳定的mRNA表达密切相关，一些没有传统组蛋白修饰的区域则可以被迅速的激活或抑制。因此，宽的H3K4me3修饰在早期胚胎发育过程中作为一种可调节的表观遗传修饰精确调控了各个时期基因的表达，并且可能在更多的生理过程中发挥重要作用。

进一步的分析表明组蛋白去甲基化酶Kdm5b对H3K4me3信号长度的变化起很重要的调控作用，敲降Kdm5b会导致基因组上H3K4me3信号普遍的延长，以及胚胎发育的阻滞。另外，在对二价基因的探讨中，该研究发现早期胚胎中的二价基因含量很少并且不稳定。 

总之，该研究成果第一次建立起了小鼠植入前胚胎发育过程中的组蛋白H3K4me3和H3K27me3修饰图谱，并发现了植入前胚胎发育特殊的表观遗传调控机制，该研究为进一步研究植入前胚胎发育以及早期细胞分化的表观遗传调控机制打开了一扇大门。 

文章链接：

Xiaoyu Liu, et al, "Distinct features of H3K4me3 and H3K27me3 chromatin domains in pre-implantation embryos,"  Nature (2016), doi:10.1038/nature19362

高绍荣教授简介：

同济大学生命科学与技术学院院长，教授，Email：gaoshaorong@tongji.edu.cn

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研究方向：主要利用体细胞核移植与诱导多能干细胞技术从事哺乳动物早期胚胎发育和体细胞重编程分子机制与干细胞研究。与中科院动物研究所周琪实验室在2009年分别独立报道了iPS小鼠的研究成果，从而在世界上首次证明了iPS细胞的真正多能性，被美国TIMES评为2009年世界十大医学突破之一。最近的研究证明DNA羟甲基化酶Tet1可以有效替代Oct4将体细胞重编程为iPS细胞并进一步阐释了其分子机制，而所形成的T-iPS细胞可以经四倍体补偿产生iPS小鼠并且没有肿瘤的发生。

（本文信息来源：同济大学网站；由e科网整理编辑）

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